Inmunohistoquímica en el diagnóstico de la fiebre amarilla. Experiencia en el Dpto. de Patología, del Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud y la Cátedra de Anatomía Patológica, Facultad de Ciencias Medicas, Universidad Nacional de Asunción
Resumen
distintos métodos como serología, cultivo celular, biología molecular, histopatología e inmunohistoquímica (IHQ). La IHQ identifica, en las muestras obtenidas postmortem, la presencia, a nivel tisular, del antígeno viral causante de la enfermedad mediante una unión antígeno-anticuerpo altamente específica. El objetivo de este estudio fue
determinar por IHQ la presencia del antígeno del virus de la FA en tejidos hepáticos de pacientes fallecidos con sospecha de FA en el Paraguay. Estudio descriptivo en muestras de tejido hepático (bloques de parafina) obtenidos postmortem, con autorización de los familiares, de 4 pacientes fallecidos con sospecha clínica de FA. Los bloques de parafina fueron enviados, codificados para respetar la confidencialidad de los pacientes, por la Cátedra de Anatomía Patológica de la Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad Nacional de Asunción (UNA) al Dpto. de Patología del Instituto de Investigaciones en Ciencias de la Salud (IICS-UNA) para el análisis por IHQ. Se utilizó el anticuerpo primario anti-fiebre amarilla y la técnica del complejo avidina-biotina-peroxidasa, se agregaron cortes de control positivo y negativo para cada caso. Todas fueron positivas para FA. La positividad de la tinción se evaluó por microscopía óptica y en relación a los hallazgos
histopatológicos, se consideró positivos aquellos casos en los que se observó una tinción marrón en el citoplasma de las células hepáticas. La positividad se observó en todos los casos sospechosos y en los controles positivos. Los controles negativos no presentaron esta tinción. La IHQ en conjunto con otras técnicas laboratoriales y los criterios clínicos contribuye al diagnóstico postmortem en los casos de FA, y se constituye en una herramienta de diagnóstico muy útil que permite realizar el diagnóstico retrospectivo, en los casos que no ha sido posible realizar otros estudios.
Palabras clave
Texto completo:
PDFReferencias
Rodriguez G, Velandia M, Boshel J. Fiebre amarilla: La enfermedad y su control. Bogotá: Instituto Nacional de Salud; 2003.
Organización Panamericana de la Salud. Enfermedades infecciosas emergentes y reemergentes, Región de las Américas Fiebre amarilla selvática (FAS) en Brasil, Paraguay, Argentina. Boletín PAHO 2008; 5(4).
Monath TP. Yellow fever: an update. Lancet Inf Dis 2001;1:11-20.
Singh MK, Brillman J. Yellow Fever. eMedicine World Medical Library. [Online]. [Consultado mayo 2009] Disponible en http://www.emedicine.com/emerg/topic645.htm.
Neyra J, Sipan F. La fiebre amarilla, pasado y presente en el Perú. Rev Diag. 1983; 12(03):86-95.
Cáceres DC. La fiebre amarilla y su vigilancia en salud pública. Inf Quin Epidemiol Nac 1999; 4:7-11.
Organización Panamericana de la Salud. Alternativas para la prevención y control del dengue y del dengue hemorrágico en los países de Centroamérica. Washington: OPS/OMS; 1995.
Paraguay. Ministerio de Salud pública y Bienestar Social. Fiebre Amarilla en Paraguay. Boletín Epidemiológico semanal. 9 (6).
Bacchi CE, Grown AM, Bacchi MM. Detection of infectious disease agents in tissue by immunocytochemistry. Braz J Med Biol Res 1994; 27(12): 2803-20.
Jasani B, Schmid K. Immunocytochemistry in diagnosis of neoplastic diseases.En Jasani-Schmid, (Ed). Immunocytochemistry in diagnostic histopathology. London: Churchill Livingstone; 1993.p 31-125.
Sarmiento L, Rodríguez G, Boshell J. Diagnóstico immunohistoquímico del dengue en cortes de parafina. Biomed. 1995;15:10-5.
Brunnert SR, Dai Y, Kohn DF. Comparison of polymerase chain reaction and immunohistochemistry for the detection of Mycoplasma pulmonis in paraffin- embedded tissue. Lab
Anim Sc. 1994; 44(3):257-60.
Ricaurte O, Sarmiento L, Caldas ML, Rodríguez G. Evaluación de un método inmunohistoquímico para el diagnóstico de la fiebre amarilla. Biomédica. 1993;13:15-9.
Pelegrino JL, Arteaga E, Rodriguez AJ, Gonzales E, Frontera MC, Guzmán MG. Normalización de técnicas inmunohistoquímicas para la detección de antígenos del virus dengue en tejidos embebidos en parafina. Instituto de Medicina Tropical “Pedro Kourí”. Rev Cub Med Trop. 1997;49(2):86-93.
Faran ME, Romoser WS, Routier RG, Bailey ChL. Use of the avidin biotin-peroxidase complex immunocytochemical procedure for detection of Rift Valley fever virus in paraffin section of mosquitoes. Am J Trop Med Hyg. 1986; 35 (5): 1061-7.
Se Thoe SY, Sam CK, Cheng HM , Prasad U. Improved sensitivity of detection by avidin- biotin complex (ABC), immunocytochemistry in Epstein-Barr virus serology. J Med Virol. 1989; 29:311-4.
Muñoz E, Morón C, Kemper R, Román. Inmunohistoquímica en el diagnóstico de fiebre amarilla. An Fac Med Lima 2004; 65(3).
MonathTP, Ballinger ME, Miller BR, Salaum JJ. Detection of yellow fever viral RNA by nucleic acid hibridizatin and viral antigen by immunocytochemistry in fixed human liver. Am J Trop Med Hyg 1989; 40:663-8.
Méndez J, Parra E, Neira M, Rey G. Detección por reacción en cadena de la polimerasa de transcriptasa inversa del virus de la fiebre amarilla en monos silvestres: una herramienta sensible para la vigilancia epidemiológica. Biomédica 2007; 27:461-7.
Méndez J, Rodríguez G, Bernal M, Calavache D, Boshell. Detección molecular del virus de la fiebre amarilla en muestras de suero de casos fatales humanos y en cerebros de ratón. Biomédica 2003; 23:232-8.
Enlaces refback
- No hay ningún enlace refback.
Todo el contenido de esta revista, excepto dónde está identificado, está bajo una Licencia Creative Commons
---------------------------------------------------------------------------------------------
Mem. Inst. Investig. Cienc. Salud