Evaluación de los efectos mutagénicos/antimutagénicos de Luehea divaricata en ratones

Edith Alba Segovia Edith Alba Segovia, Romina Aidee Arrúa, Nathalia Celeste Barrozo, Rubén Darío Duré, Héctor David Nakayama, Inocencia Peralta

Resumen


La Lueheadivaricata Mart. conocida popularmente en el Paraguay como “ka´aovetî o ka´aovetîpytâ”, es una planta nativa de la región utilizada como fitoterápico. El objetivo de este trabajo fue el de investigar el efecto protector del extracto acuoso de las hojas de L. divaricata frente al quimioterápico ciclofosfamida, en médula ósea de ratones. Los animales fueron divididos en 4 grupos de 5 animales cada uno; el Grupo I, control negativo, que recibió 200 μL de agua, vía oral; el Grupo II, que recibió 200 μL del extracto acuoso de L. divaricata; el Grupo III, que recibió 200 μL del extracto acuoso de L. divaricata y ciclofosfamida, 50 mg/Kg de peso de animal y el Grupo IV, fue el control positivo, recibió ciclofosfamida 50mg/Kg/peso de animal. El extracto acuoso de L. divaricata fue administrado por vía oral y el tratamiento se administró por 48h, la ciclofosfamida fue administrada por vía intraperitoneal 24h antes del sacrifico del animal .Se extrajo la médula ósea de los animales y se realizó el ensayo de micronúcleo en todas las muestras. Los resultados indicaron que el extracto acuoso de L. divaricata no presentó actividad mutagénica, cuando combinado con el agente mutagénico induce una reducción de hasta 49% en la frecuencia de micronúcleos, al ser comparado con el tratamiento con ciclofosfamida, sugiriendo un potencial efecto protector frente a agentes tóxicos.

Palabras clave


Luehea divaricata; micronúcleo; efecto protector.

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Referencias


Paraguay: Informe Nacional para la Conferencia Técnica Internacional de la FAO sobre los Recursos Fitogenéticos (Leipzing, 1996), Asunción, junio 1995.

González -Torres D. 2005. Catálogo de plantas medicinales (y alimenticias y útiles) usadas en Paraguay. 2005. Editorial Servilibro, Asunción-Paraguay.

Molfino JF. Nota sobre las especies argentinas de Género Luehea.Com. Museo nacional de historia natural de Buenos Aires, 1923 2(5):53-60 in: Di Sapio O.A. y Gattuso M.A. Análisis micrográfico para la identificación de la corteza de Luehea divaricata Mart. (“sota caballo, Arbol de San Francisco”) (Tiliaceae). 1996. ROJASIANA 3 (2):177-185.

Pin A, González G, Marín G, Céspedes G, Cretton S, Christen P, Rouguet D. Plantas medicinales del jardín Botánico de Asunción. 2009. Asociación Etnobotánica paraguaya 441.

Vargas VM, Guidobono RR, Henriques JA. Genotoxicity of plant extracts. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1991;86Suppl 2:67-70.

Felicio LP, Silva EM, Ribeiro V, Miranda CT, Vieira IL, Passos DC, Ferreira AK, Vale CR, Lima DC, Carvalho S, Nunes WB. Mutagenic potential and modulatory effects of the medicinal plant Lueheadivaricata (Malvaceae) in somatic cells of Drosophila melanogaster: SMART/wing.Genetics and Molecular Research. 2011 Jan 4;10(1):16-24.

Duré RD, Nakayama HD, Ibarra P, Segovia E. Estudios del potencial genotóxico, in vivo, de Luehea divaricata (ka´áovetî o

ka´áovetîpytâ). Jornadas de Jóvenes Investigadores- Presentación oral. Julio 2012.Universidad Nacional de Asunción.

Maistro EL, Mota SF, Lima EB, Bernardes BM, Goulart FC. Genotoxicity and mutagenicity of Rosmarinus officinalis (Labiatae) essential oil in mammalian cells in vivo. 2010. Genetics and Molecular Research 9 (4): 2113-22.

Kandimalla et al. Effect of Z. jujubaon Liver Toxicity and Inflammation, Frontiers in Pharmacology 11 September 2016doi: 10.3389/fphar.2016.00298 | Volume 7 | Article 298

Ghoneum MK, Badr El-Din N, Abdel Fattah SM, Tolentino L. Arabinoxylan rice bran (MGN-3/Biobran) provides protection against whole-body γ-irradiation in mice via restoration of hematopoietic tissues. Journal of Radiation Research, 2013, 54, 419–429.

Madrigal-Santillán E, Fragoso-Antonio S, Valadez-Vega, C, Solano-Solano, G, Zúñiga Pérez C, Sánchez-Gutiérrez, M, Izquierdo-Vega, J. A, Gutiérrez-Salinas, J, Esquivel-Soto, J, Esquivel-Chirino, C, Teresa Sumaya-Martínez, T, Fregoso-Aguilar, T, Mendoza-Pérez, J and Morales-González, J.A. Investigation on the Protective Effects of Cranberry Againstthe DNA Damage Induced by Benzo[a]pyrene. Molecules 2012, 17, 4435-51.

Fan ZL, Wang ZY, Zuo LL, Tian SQ. Protective effect of anthocyanins from lingonberry on radiation-induced

damages Int J Environ Res Public Health. 2012 Dec.

;9(12):4732-43. doi: 10.3390/ijerph9124732.

Melo-Cavalcante AA, Dantas SM, Leite Ade S, Matos LA, e Sousa JM, Picada JN, da Silva J. In vivo antigenotoxic and anticlastogenic effects of fresh and processed cashew (Anacardiumoccidentale) apple juices. Med Food. 2011 Jul-Aug;14(7-8):792-8. Epub 2011 May 25.

Schmid W. The micronuclei test. Mutat Res. 1975; 31:9-15.

Hammer Ø, Harper DAT, Ryan PD. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis. Palaeontologia Electronica. 2001; 4(1): 9pp. http://palaeo-electronica.org/2001_1/past/issue1_01.htm.

Ayres, M, Ayres Júnior M, Ayres DL. & Santos AA. 2007. BIOESTAT – Aplicações estatísticas nas áreas das ciênciasbio-médicas. Ong Mamiraua. Belém, PA.

Devi HP, Mazumder PB. Methanolic Extract of Curcuma caesia Roxb. Prevents the Toxicity Caused by Cyclophosphamide to Bone Marrow Cells, Liver and Kidney of Mice. Pharmacognosy Research, 2016, Jan-March, 8(1):43-9.

Patlolla AK, Hussain SM, Schlager RJ J, Patlolla S, Tchounwou PB. Comparative Study of the Clastogenicity of Functionalized and Non-functionalized Multi-walled Carbon Nanotubes in Bone Marrow Cells of Swiss-Webster Mice. Environ Toxicol. 2010 25(6): 608–21.

Premkumar K, Bowlus CL. 2003. Ascorbic Acid Reduces The Frequency Of Iron Induced Micronuclei In Bone Marrow Cells Of Mice. Mutat Res. 2003; Dec 9;542(1-2):99-103.

de Carvalho NC, Frydberg Corrêa-Angeloni MJ, Dimer Leffa D, Moreira J, Nicolau V, de Aguiar Amaral P, Rossatto AE, Moraes de Andrade V. Evaluation of the genotoxic and antigenotoxic potential of Melissa officinalis in mice. Genet Mol Biol. 2011 Apr-Jun; 34(2): 290–7.

De Salvia R, Fiore M, Aglitti T, Festa F, Ricordy R, Cozzi R. Inhibitory action of melatonin on H2O2- and cyclophosphamide-induced DNA damage.. Mutagenesis. 1999; 14 (1) pp.107–12.

Franke SI, Prá D, Erdtmann B, Henriques JA, da Silva J. Influence of orange juice over the genotoxicity induced by alkylating agents: an in vivo analysis.Mutagenesis. 2005 Jul; 20(4):279-83.

Rehman MU, Tahir M, Ali F, Qamar W, Lateef A, Khan R, Quaiyoom A, Oday-O-Hamiza, Sultana S. Cyclophosphamide-induced nephrotoxicity, genotoxicity, and damage in kidney genomic DNA of Swiss albino mice: the protective effect of Ellagic acid. Mol Cell Biochem. 2012 Jun;365(1-2):119-27.


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